Сорбционные свойства мха по отношению к микроорганизмам и тяжелым металламСлегка касаясь бактериологической петлей поверхности среды, проводят от дна пробирки вверх зигзагообразную линию, тем самым, засевая культуру микроорганизмов. После посева пробирки помещают в термостат (30°С) на 1 сутки (по истечению этого срока пробирки извлекают из термостата) и заливают в них по 2.0-3.0 мл физиологического раствора (ФР). Осторожно отделяют микробную культуру от агара постепенным встряхиванием и покачиванием пробирки. Полученную суспензию хранят в холодильнике. 2.1.2. Определение количества жизнеспособных клеток методом высева на плотную среду Микробную суспензию разводят в стерильном физиологическом растворе, при этом используя один и тот же коэффициент разведения. Посев осуществляют из 5-ого, 6-ого и 7-ого разведений перенося 0, 1 мл суспензии на поверхность питательного агара в чашках Петри. Затем суспензию равномерно распределяют шпателем по питательному агару. Высев из каждого разведения осуществляют стерильной пипеткой. После посева чашки помещают в термостат (30°С) на сутки. Количество жизнеспособных клеток в 1 мл суспензии рассчитывают по следующей формуле: M=a * 10 z / V; ( 2.1 ) | |||||||||
БГТУ 02.00.ПЗ | |||||||||
Изм. | Кол.уч. | Лист | № док. | Подпись | Дата | ||||
Разраб. | Ковалевич А. | Экспериментальная часть | Стадия | Лист | Листов | ||||
Пров. | 1 | 18 | |||||||
Консульт. | БГТУ 7140607 2004 | ||||||||
Н.контр. | |||||||||
Утв. |
Величину оптической плотности измеряют с помощью фотоколориметра ФЭК-56М. Для измерения светорассеяния выбирают светофильтр, который обеспечивает максимум пропускания света данной суспензией. В результате опытов получили, что максимум пропускания света обеспечивает длина волны 540 нм. 2.1.3 . Изучение сорбции металлов мхом Для эксперимента на аналитических весах взвешивают образцы мха массой 200 + 0,5 мг и помещают их в стеклянные флаконы с привинчивающимися крышками объемом 100мл. Затем в эти же флаконы заливают по 50 мл раствора металла различной концентрации (для эксперимента были выбраны следующие концентрации металлов: 0,1; 0,02;0,005; 0,0001; 0,00002; 0,00001 моль/л), которые готовят путем последовательного разведения исходного раствора соли металла (0,1 моль/л). Флаконы закрывают и оставляют на 24 часа при комнатной температуре (18 + 2°С) при периодическом перемешивании. После чего мох из суспензии отфильтровывают через бумажный фильтр в колбы для титрования и титруют по следующим методикам. 2.1.3.1. Определение меди комплексонометрическим методом В качестве источника меди использовали сульфат меди. Ионы меди образуют с ЭДТА комплексы голубого цвета с константой устойчивости 6,3*10 18 (ионная сила 0,1: 20 °С). Анализируемый раствор разбавляют водой до метки в мерной колбе.
Равновесные растворы с исходной концентрацией 0,100 моль/л после фильтрования в количестве 48 мл разбавляют водой в мерной колбе до 100 мл. После перемешивания отбирают пипеткой аликвотную часть раствора в коническую колбу, прибавляют 20 мл дистиллированной воды, 5 мл буферного раствора, на кончике металлического шпателя 20-30 мг индикаторной смеси, растворяют ее и титруют раствором ЭДТА 0,0500 М до изменения окраски из зеленовато-желтого цвета в чисто-фиолетовую.
Измеряют объем ЭДТА и вводят 1 каплю 2 М раствора NH4ОН, если цвет раствора остается фиолетовым, титрование прекращают; если от добавления аммиака окраска изменилась в желтую или желто-зеленую, продолжают титрование раствором ЭДТА до устойчивой фиолетовой окраски. В качестве буферного раствора используют ацетатный буфер (ацетат аммония, 50% раствор) с pH6. Титрование ведут на холоду (при комнатной температуре 18 + 2°С). В качестве металлоиндикатора используют мурексид (смесь с хлоридом натрия в соотношении 1:100). Массу определяемого вещества рассчитывают по формуле (2.2.): m= (V1*Vж*c1*M)/(V2*1000) ( 2.2 ) где - V1 - объем раствора ЭДТА, пошедшего на титрование; V2 - объем анализируемого равновесного раствора (аликвотная часть); c1 - молярная концентрация ЭДТА; M - молярная масса определяемого вещества; Vж - объем мерной колбы, из которой отбирали аликвотную часть. 2.1.3.2. Определение кадмия комплексонометрическим методом В качестве источника кадмия в работе использовали ацетат кадмия.
Отбирают аликвотную часть анализируемого раствора из мерной колбы вместимостью 100 мл, прибавляют 2-3 мл буферного раствора с pH 10 (аммиачный буферный раствор: 67г NH4Cl и 570 мл 25%-ного NH3 в 1 л раствора), 15 мл воды, перемешивают и прибавляют на кончике шпателя 20-30 мг смеси индикатора эриохромового черного Т и хлорида натрия.
Перемешивают до полного растворения индикаторной смеси и титруют раствором ЭДТА 0,0500 М до изменения окраски раствора из винно-красной в голубую. Массу определяемого вещества рассчитывают по вышеуказанной формуле (2.2). 2.1.4. Определение кинетики сорбции металлов мхом В стеклянные флаконы помещают навески по 200 + 0,5 мг мха, взвешенные на аналитических весах.
Добавляют по 50 мл раствора металла 0,02 моль/л и тщательно перемешивают. Через 5, 10, 20, 30, 60 и 120 мин мох отфильтровывают из анализируемых растворов.
Фильтраты меди и кадмия оттитровывают раствором ЭДТА по вышеописанной методике. 2.1.5. Изучение сорбции металлов микроорганизмами В мерную колбу на 50 мл сначала добавляют 1 мл микробной суспензии, затем доводят объем до метки исследуемым раствором металла. После этого вливают содержимое мерной колбы во флаконы на 100 мл с привинчивающимися крышками.
Флаконы оставляют на 24 часа, по истечении которых растворы центрифугируют при 8000 об/мин в течение 10 минут. Далее раствор, отделенный от микроорганизмов, оттитровывают раствором ЭДТА по вышеописанной методике. 2.1.6. Определение кинетики сорбции металлов микроорганизмами В мерную колбу на 50 мл сначала добавляют 1 мл микробной суспензии, затем доводят объем до метки исследуемым раствором металла. После этого вливают содержимое мерной колбы во флаконы на 100 мл с привинчивающимися крышками. Через 5, 10, 20, 30, 60 и 120 мин отфильтровывают культуру микроорганизмов на микробном фильтре и фильтраты оттитровывают раствором ЭДТА. 2.1.7. Изучение сорбции металлов в системе мох-суспензия микроорганизмов В стеклянные флаконы помещают пробы мха 200 + 0,5 мг предварительно взвешенные на аналитических весах. Потом в эти же стеклянные флаконы добавляют 50 мл раствора металла различной концентрации. И затем добавляют 1 мл микробной суспензии. После этого систему при периодическом перемешивании оставляют на 24 часа. Через сутки исследуемые растворы отфильтровывают на микробном фильтре и титруют раствором ЭДТА по методикам указанным в пп. 2.1.3.1. и 2.1.3.2.. 2.1.8. Определение кинетики сорбции металлов микроорганизмами, адсорбированными на мхе В стеклянные флаконы с привинчивающимися крышками помещают навески мха массой 200 + 0,5 мг, 1 мл микробной суспензии и 50 мл раствора металла 0,02 моль/л. Через 5, 10, 20, 30, 60, 120 мин культуру микроорганизмов отфильтровывают через микробный фильтр и фильтраты оттитровывают раствором ЭДТА. 2.1.9. Получение кривой выживаемости микроорганизмов Выживаемость микроорганизмов изучают посевом их на чашки Петри с питательным агаром.
Микробную суспензию используют после обработки ее металлами в опыте по изучению сорбции металлов микроорганизмами. 2.1.10. Изучение адсорбции микроорганизмов мхом В мерную колбу на 50 мл сначала добавляют 1 мл микробной суспензии и доводят объем до метки дистиллированной водой. Затем переливают раствор микробной суспензии в качальную колбу и добавляют навески мха массой 200 + 0,5 мг. Все колбы ставят на качалку на 2 часа.
Измеряют оптическую плотность и делают высев на жизнеспособность.
Результаты представлены в таблице 2.8. 2.2. Результаты исследований и их обсуждение В качестве сорбента-носителя микроорганизмов использовался мох из класса мхи (Мusci) подкласса сфагновые, семейства сфагновые, Sphagnum cuspidatum. Данный вид мха был выбран в связи с тем, что он обладает значительным ареалом распространения в нашей республике. В качестве микроорганизмов, способных к поглощению тяжелых металлов, изучались Pseudomonas aeroginosa B7. Это прямые или слегка изогнутые палочки, размером 0,5-1 мкм.
Граммотрицательные, обладают подвижностью за счет одного полярного жгутика, тип дыхания - аэробы, метаболизм чисто дыхательного типа с использованием кислорода как конечного акцептора электронов, данные бактерии могут выделять в среду сине-зеленый пигмент.
Данные бактерии широко распространены, так, например, они часто встречаются при гнойных инфекциях в медицинских учреждениях.
Полученные экспериментальные данные в опыте по изучению сорбции металлов мхом (2.1.3.) сведены в таблицу 2.1. и представлены в виде изотерм сорбции на рисунках 2.1. и 2.2.. Таблица 2.1 Данные ионообменной сорбции металлов мхом
Навеска мха, г | Исходная концентрация соли металла, моль/л | Объем аликвоты, мл | Объем ЭДТА 0,05 моль/л пошедшего на титрование, мл | Равновесная концентрация соли металла, моль/л | Количество сорбированного металла, мг-экв/г |
Сульфат меди, CuSO4 | |||||
0,2012 | 0,1 | 10 | 9,85 | 0,09855 | 0,72 |
0,1998 | 0,1 | 10 | 9,86 | 0,09863 | 0,68 |
0,2001 | 0,02 | 10 | 3,73 | 0,01865 | 0,67 |
0,2020 | 0,02 | 10 | 3,74 | 0,01868 | 0,66 |
0,1995 | 0,005 | 25 | 1,95 | 0,00389 | 0,55 |
0,1987 | 0,005 | 25 | 1,99 | 0,00397 | 0,51 |
Ацетат кадмия, Cd(CH3COO)2 | |||||
0,2013 | 0,1 | 10 | 9,86 | 0,09864 | 0,69 |
0,2210 | 0,1 | 10 | 9,87 | 0,09871 | 0,66 |
0,1899 | 0,02 | 10 | 3,75 | 0,01876 | 0,62 |
0,2430 | 0,02 | 10 | 3,76 | 0,01880 | 0,60 |
0,2150 | 0,005 | 25 | 1,93 | 0,00386 | 0,57 |
0,2000 | 0,005 | 25 | 1,95 | 0,00390 | 0,55 |
Полученные результаты полностью соответствуют существующим сведениям об ионообменной емкости мха, которая по литературным сведениям считается равной 1мг-экв/г. На основании представленных рис.2.1. и 2.2. можно говорить, что мох является хорошим природным ионообменником и обладает хорошими сорбционными свойствами по отношению к тяжелым металлам, это достигается наличием в структуре мха таких веществ как полиурониды (полисахариды, содержащие карбоксильную группу в 6-пложении пиранового или ангидроглюкозного цикла) и пектина.
Сравнивания результаты сорбции ионов меди и ионов кадмия можно сделать вывод, что из исследованных тяжелых металлов лучше сорбируется мхом медь (Cu), чем кадмий (Cd). Это может быть связано в первую очередь с тем, что ионы меди лучше удерживаются карбоксильными группами мха в составе клеточной стенки мха, которые и отвечают в основном за ионообменную активность мха.
Полученные экспериментальные данные в опыте по изучению кинетики сорбции металлов мхом (2.1.4.) сведены в таблицу 2.2. и представлены в виде кинетических кривых сорбции на рисунках 2.3 и 2.4.. Таблица 2.2 Данные по кинетике сорбции металлов мхом
Время, мин | Навеска мха, г | Исходная концентрация соли металла, моль/л | Объем аликвоты, мл | Объем ЭДТА 0,05 моль/л пошедшего на титрование, мл | Равновесная концентрация соли металла, моль/л | Количество сорбированного металла, мг-экв/г |
Ацетат кадмия, Cd(CH3COO)2 | ||||||
5 | 0,2014 | 0,02 | 10 | 3,99 | 0,01997 | 0,01 |
10 | 0,2218 | 0,02 | 10 | 3,94 | 0,01972 | 0,14 |
20 | 0,1899 | 0,02 | 10 | 3,92 | 0,01958 | 0,21 |
30 | 0,2434 | 0,02 | 10 | 3,86 | 0,01931 | 0,35 |
60 | 0,2156 | 0,02 | 10 | 3,81 | 0,01903 | 0,49 |
120 | 0,2213 | 0,02 | 10 | 3,81 | 0,01903 | 0,49 |
Сульфат меди, CuSO4 | ||||||
5 | 0,2266 | 0,02 | 10 | 3,82 | 0,01912 | 0,44 |
10 | 0,2312 | 0,02 | 10 | 3,80 | 0,01901 | 0,50 |
20 | 0,1899 | 0,02 | 10 | 3,77 | 0,01885 | 0,57 |
30 | 0,2001 | 0,02 | 10 | 3,75 | 0,01874 | 0,63 |
60 | 0,2166 | 0,02 | 10 | 3,73 | 0,01863 | 0,69 |
120 | 0,1959 | 0,02 | 10 | 3,73 | 0,01863 | 0,69 |
Результаты изучения сорбции металлов микроорганизмами (2.1.5.) сведены в таблицу 2.3. и представлены в виде изотерм сорбции металлов на рис.2.5.и 2.6.. Таблица 2.3 Данные по сорбции металлов микроорганизмами
Навеска мха, г | Исходная концентрация соли металла, моль/л | Объем аликвоты, мл | Объем ЭДТА 0,05 моль/л пошедшего на титрование, мл | Равновесная концентрация соли металла, моль/л | Количество сорбированного металла, мг-экв/мл | Количество сорбированного металла мг-экв/см3 плотно упакованных клеток |
Ацетат кадмия, Cd(CH3COO)2 | ||||||
0,1945 | 0,1 | 10 | 9,98 | 0,09979 | 0,11 | 8,0046 |
0,2230 | 0,1 | 10 | 9,99 | 0,09986 | 0,08 | 5,6172 |
0,1981 | 0,02 | 10 | 3,96 | 0,01979 | 0,11 | 7,5130 |
0,2054 | 0,02 | 10 | 3,97 | 0,01986 | 0,07 | 4,9151 |
0,1980 | 0,005 | 25 | 2,38 | 0,00476 | 0,12 | 8,4258 |
0,1996 | 0,005 | 25 | 2,40 | 0,00480 | 0,10 | 7,0215 |
Сульфат меди, CuSO4 | ||||||
0,2032 | 0,1 | 10 | 9,93 | 0,09933 | 0,33 | 23,1711 |
0,1975 | 0,1 | 10 | 9,94 | 0,09941 | 0,29 | 20,3625 |
0,1987 | 0,02 | 10 | 3,89 | 0,01947 | 0,27 | 18,6071 |
0,2005 | 0,02 | 10 | 3,90 | 0,01948 | 0,26 | 18,2560 |
0,2400 | 0,005 | 25 | 2,24 | 0,00449 | 0,25 | 17,6943 |
0,2265 | 0,005 | 25 | 2,26 | 0,00451 | 0,24 | 16,8517 |
Однако стоит отметить, что в настоящее время существуют более эффективные формы микроорганизмов, которые используются для биосорбции металлов из растворов, в том числе и штаммы данного рода. Из исследованных тяжелых металлов лучше сорбируется мхом и микроорганизмами медь (Cu), чем кадмий (Cd) (см. рис.2.5 и 2.6.) Можно сделать предположение о том, что это связано в первую очередь с тем, что в небольших количествах медь является одним из важнейших биогенных элементов, необходимых для развития микроорганизмов и наряду с сорбцией имеет место утилизация микроорганизмами ионов меди.
Результаты изучения кинетики сорбции микроорганизмами ионов металлов сведены в таблицу 2.4. и представлены в виде кинетических кривых.
Таблица 2.4 Данные по кинетике сорбции металлов микроорганизмами
Время, мин | Навеска мха, г | Исходная концентрация соли металла, моль/л | Объем аликвоты, мл | Объем ЭДТА 0,05 моль/л пошедшего на титрование, мл | Равновесная концентрация соли металла, моль/л | Количество сорбированного металла, мг-экв/мл | Количество сорбированного металла мг-экв/см3 плотно упакованных клеток |
Ацетат кадмия, Cd(CH3COO)2 | |||||||
5 | 0,1874 | 0,02 | 10 | 4,00 | 0,01999 | 0,01 | 0,3511 |
10 | 0,1755 | 0,02 | 10 | 3,98 | 0,01990 | 0,05 | 3,3703 |
20 | 0,2100 | 0,02 | 10 | 3,98 | 0,01988 | 0,06 | 4,3534 |
30 | 0,1990 | 0,02 | 10 | 3,97 | 0,01985 | 0,07 | 5,1257 |
60 | 0,1980 | 0,02 | 10 | 3,96 | 0,01982 | 0,09 | 6,2492 |
120 | 0,1996 | 0,02 | 10 | 3,96 | 0,01981 | 0,10 | 6,7407 |
Сульфат меди, CuSO4 | |||||||
5 | 0,1955 | 0,02 | 10 | 3,97 | 0,01985 | 0,07 | 5,1959 |
10 | 0,2230 | 0,02 | 10 | 3,96 | 0,01978 | 0,11 | 7,5833 |
20 | 0,1906 | 0,02 | 10 | 3,94 | 0,01971 | 0,15 | 10,2515 |
30 | 0,2054 | 0,02 | 10 | 3,93 | 0,01964 | 0,18 | 12,4281 |
60 | 0,1980 | 0,02 | 10 | 3,90 | 0,01949 | 0,26 | 17,9751 |
120 | 0,1996 | 0,02 | 10 | 3,90 | 0,01949 | 0,26 | 17,9751 |
Равновесное состояние устанавливается в течение часа. Также можно сказать, что сорбция меди идет быстрее.
Полученные результаты в экспериментах по изучению сорбции металлов в системе мох-суспензия микроорганизмов (п.2.1.6.) сведены в таблицу 2.5. и представлены в виде изотерм сорбции на рис. 2.9.и 2.10.. Таблица 2.5 Данные по сорбции металлов в системе мох-суспензия микроорганизмов
Навеска мха, г | Исходная концентрация соли металла, моль/л | Объем аликвоты, мл | Объем ЭДТА 0,05 моль/л пошедшего на титрование, мл | Равновесная концентрация соли металла, моль/л | Количество сорбированного металла, мг-экв/г |
Ацетат кадмия, Cd(CH3COO) | |||||
0,2156 | 0,1 | 10 | 9,84 | 0,09842 | 0,80 |
0,2643 | 0,1 | 10 | 9,85 | 0,09850 | 0,76 |
0,1986 | 0,02 | 10 | 3,69 | 0,01846 | 0,77 |
0,1921 | 0,02 | 10 | 3,70 | 0,01850 | 0,75 |
0,1896 | 0,005 | 25 | 1,73 | 0,00346 | 0,77 |
0,1955 | 0,005 | 25 | 1,71 | 0,00342 | 0,79 |
Сульфат меди, CuSO4 | |||||
0,2000 | 0,1 | 10 | 9,80 | 0,09805 | 0,97 |
0,1955 | 0,1 | 10 | 9,81 | 0,09811 | 0,94 |
0,1970 | 0,02 | 10 | 3,63 | 0,01816 | 0,92 |
0,1979 | 0,02 | 10 | 3,64 | 0,01819 | 0,90 |
0,2053 | 0,005 | 25 | 1,62 | 0,00323 | 0,88 |
0,1990 | 0,005 | 25 | 1,61 | 0,00322 | 0,89 |
Время, мин | Навеска мха, г | Исходная концентрация соли металла, моль/л | Объем аликвоты, мл | Объем ЭДТА 0,05 моль/л пошедшего на титрование, мл | Равновесная концентрация соли металла, моль/л | Количество сорбированного металла, мг-экв/г |
Ацетат кадмия, Сd(CH3COO)2 | ||||||
5 | 0,2251 | 0,02 | 10 | 3,95 | 0,01975 | 0,13 |
10 | 0,2643 | 0,02 | 10 | 3,95 | 0,01974 | 0,13 |
20 | 0,1986 | 0,02 | 10 | 3,93 | 0,01965 | 0,18 |
30 | 0,1921 | 0,02 | 10 | 3,93 | 0,01965 | 0,18 |
60 | 0,1896 | 0,02 | 10 | 3,69 | 0,01845 | 0,78 |
120 | 0,1955 | 0,02 | 10 | 3,69 | 0,01845 | 0,78 |
Сульфат меди, CuSO4 | ||||||
5 | 0,2312 | 0,02 | 10 | 3,79 | 0,01897 | 0,52 |
10 | 0,2087 | 0,02 | 10 | 3,79 | 0,01897 | 0,52 |
20 | 0,1982 | 0,02 | 10 | 3,79 | 0,01895 | 0,52 |
30 | 0,19 | 0,02 | 10 | 3,75 | 0,01873 | 0,64 |
60 | 0,191 | 0,02 | 10 | 3,68 | 0,01841 | 0,79 |
120 | 0,24 | 0,02 | 10 | 3,67 | 0,01833 | 0,83 |
Результаты эксперимента по получению кривых выживаемости микроорганизмов Pseudomonas aeruginosa (2.1.9.) представлены на рис. 2.13. и 2.14.. > Рис. 2.13. Рис.2.14.> Результаты данного эксперимента полностью соответствуют литературным сведениям о выживаемости микроорганизмов при воздействии на них ионов тяжелых металлов [5,7]. Сопоставляя результаты этого эксперимента и эксперимента по изучению сорбции металлов микроорганизмами (пп.2.1.5. и 2.1.6.) можно говорить о том, что сорбция ведется и мертвой культурой, что подтверждает физический характер сорбции при использовании микроорганизмов.
Результаты изучения адсорбции микроорганизмов мхом (п.2.1.10.) сведены в таблицу 2.7.. Таблица 2.7
Концентрация микробной суспензии после разведения ее до 50мл, кл/мл | Оптическая плотность (D) разбавленной суспензии до опыта | Оптическая плотность (D) суспензии после проведения опыта | Концентрация микробной суспензии после проведения эксперимента, кл/мл (рис.2.15.) | Фактическая концентрация, определенная путем высева на агаризованную среду, кл/мл |
6,8*10 7 | 0,092 | 0,073 | 5,07*10 7 | 4,5*10 7 |
6,8*10 7 | 0,092 | 0,069 | 5,07*10 7 | 5*10 7 |
6,8*10 7 | 0,092 | 0,071 | 5,07*10 7 | 4*10 7 |
Данные свойства мха могут в дальнейшем найти применение в медицине, при использовании мха как энтеросорбента. > Концентрация микробной суспензии, кл/мл*10 9 Рис. 2.15. Можно сделать следующие выводы по итогам исследований: Мох является хорошим природным ионообменником и обладает хорошими сорбционными свойствами по отношению к тяжелым металлам, это достигается наличием в структуре мха таких веществ как полиурониды (полисахариды, содержащие карбоксильную группу в 6-пложении пиранового или ангидроглюкозного цикла) и пектина.
Ионообменная емкость мха по меди 0,7 мг-экв/г, по кадмию 0,65 мг-экв/г. Мох оказывает губительное воздействие на микроорганизмы.
оценка доходности облигации в Смоленскенезависимое агентство оценки в Белгороде
оценка коммерческой недвижимости в Москве